Молекулярно-генетические аспекты риска здоровью во взаимосвязи с неблагоприятными условиями окружающей среды и питанием (систематический обзор)

Файл статьи: 
Иконка PDF health-risk-analysis-2022-4-18.pdf
УДК: 
613.2
DOI: 
10.21668/health.risk/2022.4.18
Авторы: 

Т.В. Мажаева, С.Э. Дубенко, Ю.С. Чернова, И.А. Носова

Организация: 

Екатеринбургский медицинский научный центр профилактики и охраны здоровья рабочих промпредприятий, Россия, г. Екатеринбург, 620014, ул. Попова, 30

Аннотация: 

В настоящее время остается актуальным изучение влияния негативных факторов окружающей среды и пищевых веществ на экспрессию генов. Цель исследования состояла в обобщении литературных данных о взаимосвязи полиморфизма генов, участвующих в детоксикации ксенобиотиков и аллергостатусе, в том числе пищевой непереносимости, у взрослого и детского населения, с рисками здоровью. Рассматривалось также влияние компонентов пищевого рациона на экспрессию генов.
Имеющиеся в публикациях научные данные свидетельствуют о влиянии полиморфизма генов GSTP1 и SOD на снижение детоксикационной и антиоксидантной функции, раннее развитие аллергических, профессиональных и онкологических заболеваний при взаимодействии с вредными химическими веществами. Химиопротекторные микронутриенты пищевого рациона могут действовать не только как субстраты, но и как индукторы ферментов детоксикации. Предполагается, что наличие большого количества биологически активных веществ в средиземноморской диете мо-жет модулировать функциональную активность генов. Антигенотоксическим и антиканцерогенным эффектом обладают такие пищевые вещества, как полифенолы, флавоноиды, катехины, глюкозинолаты, витамины-антоцианы, стильбены, каротиноиды, полиамины спермидин и спермин.
С целью эффективного моделирования рациона питания перспективным направлением является использование комбинированных нутригенетических и фенотипических данных.
Представленные в обзоре литературные данные свидетельствуют об имеющихся доказательствах того, что риски для здоровья населения могут зависеть от генотипа, фенотипа и качества окружающей среды. Риски также различны в зависимости от модели питания. Моделирование питания на основе полученных знаний по нутригенетике и нутригеномике является перспективным направлением в системе управления риском неинфекционных заболеваний, в том числе онкологических, обусловленных воздействием внешнесредовых факторов.

Ключевые слова: 
полиморфизм генов, детоксикация, окружающая среда, фенотип, генотип, нутригенетика, нутригеномика, пищевые вещества, биологически активные вещества
Молекулярно-генетические аспекты риска здоровью во взаимосвязи с неблагоприятными условиями окружающей среды и питанием (систематический обзор) / Т.В. Мажаева, С.Э. Дубенко, Ю.С. Чернова, И.А. Носова // Анализ риска здоровью. – 2022. – № 4. – С. 186–197. DOI: 10.21668/health.risk/2022.4.18
Список литературы: 
  1. Шуматова Т.А., Приходченко Н.Г., Ефремова И.В. Молекулярно-генетические и биохимические аспекты пищевой непереносимости у детей // Вопросы детской диетологии. – 2012. – Т. 10, № 3. – С. 14–17.
  2. Косякова Н.И., Андреева Л.А., Панкратова Е.В. Поиск новых возможностей диагностики пищевой аллергии и пищевой непереносимости у детей // Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. – 2020. – № 8. – С. 32–36. DOI: 10.17513/mjpfi.13112
  3. Гурова М.М., Романова Т.А., Попова В.С. Роль кишечной микробиоты в формировании пищевой непереносимости // Медицина: теория и практика. – 2019. – Т. 4, № 1. – С. 229–232.
  4. Касьянова Т.А. Исследование влияния генетики, персонализированного питания и витаминов нутрилайт на изменение массы тела человека // Cовременная наука и молодые ученые: сборник статей III Международной научно-практической конференции. – Пенза, 2020. – С. 183–188.
  5. Ecogenetics of lead toxicity and its influence on risk assessment / M.S. Mani, S.P. Kabekkodu, M.B. Joshi, H.S. Dsouza // Hum. Exp. Toxicol. – 2019. – Vol. 38, № 9. – P. 1031–1059. DOI: 10.1177/0960327119851253
  6. Gene-environment interaction effects on the development of immune responses in the 1st year of life / S. Hoffjan, D. Nicolae, I. Ostrovnaya, K. Roberg, M. Evans, D.B. Mirel, L. Steiner, K. Walker [et al.] // Am. J. Hum. Genet. – 2005. – Vol. 76, № 4. – P. 696–704. DOI: 10.1086/429418
  7. Зайцева Н.В., Устинова О.Ю., Землянова М.А. Совершенствование стратегических подходов к профилактике заболеваний, ассоциированных с воздействием факторов среды обитания // Здоровье населения и среда обитания – ЗНиСО. – 2013. – Т. 248, № 11. – С. 14–18.
  8. Амромина А.М., Ситников И.А., Шаихова Д.Р. Взаимосвязь полиморфных вариантов генов GSTM1, GSTT1, GSTP1 с риском развития заболеваний (обзор литературы) // Гигиена и санитария. – 2021. – Т. 100, № 12. – С. 1385–1390. DOI: 10.47470/0016-9900-2021-100-12-1385-1390
  9. Martino D.J, Prescott S.L. Silent mysteries: epigenetic paradigms could hold the key to conquering the epidemic of al-lergy and immune disease // Allergy. – 2010. – Vol. 65, № 1. – P. 7–15. DOI: 10.1111/j.1398-9995.2009.02186.x
  10. Соодаева С.К. Свободнорадикальные механизмы повреждения при болезнях органов дыхания // Пульмонология. – 2012. – № 1. – С. 5–10.
  11. Панкратова Ю.С., Галяутдинова Р.Р., Дружинская О.И. Мутагенное воздействие ксенобиотиков на организм человека // Актуальные вопросы естественных и технических наук – 2017: сборник материалов всероссийской научно-практической конференции с международным участием. – 2017. – С. 61–66.
  12. Di Pietro G., Magno L.A.V., Rios-Santos F. Glutathione S-transferases: an overview in cancer research // Expert Opin. Drug Metab. Toxicol. – 2010. – Vol. 6, № 2. – P. 153–170. DOI: 10.1517/17425250903427980
  13. Schnekenburger M., Karius T., Diederich M. Regulation of epigenetic traits of the glutathione S-transferase P1 gene: from detoxification toward cancer prevention and diagnosis // Front. Pharmacol. – 2014. – Vol. 5. – P. 170. DOI: 10.3389/fphar.2014.00170
  14. Henderson C.J., Wolf C.R. Disruption of the glutathione transferase Pi class genes // Methods Enzymol. – 2005. – Vol. 401. – P. 116–135. DOI: 10.1016/s0076-6879(05)01007-4
  15. Glutathione‐S‐transferase gene polymorphisms (GSTT1, GSTM1, GSTP1) as increased risk factors for asthma / L. Tamer, M. Calikoğlu, N.A. Ates, H. Yildirim, B. Ercan, E. Saritas, A. Unlü, U. Atik // Respirology. – 2004. – Vol. 9, № 4. – P. 493–498. DOI: 10.1111/j.1440-1843.2004.00657.x
  16. Effects of glutathione-S-transferase M1, T1, and P1 on childhood lung function growth / F.D. Gilliland, W.J. Gauderman, H. Vora, E. Rappaport, L. Dubeau // Am. J. Respir. Crit. Care Med. – 2002. – Vol. 166, № 5. – P. 710–716. DOI: 10.1164/rccm.2112065
  17. London S.J., Romieu I. Gene by environment interaction in asthma // Annu. Rev. Public Health. – 2009. – Vol. 30. – P. 55–80. DOI: 10.1146/annurev.publhealth.031308.100151
  18. Polymorphisms at the glutathione S‐transferase, GSTP1 locus: a novel mechanism for susceptibility and development of atopic airway inflammation / M.A. Spiteri, A. Bianco, R.C. Strange, A.A. Fryer // Allergy. – 2000. – Vol. 55, № s61. – P. 15–20. DOI: 10.1034/j.1398-9995.2000.00502.x
  19. Associations between glutathione-S-transferase genotypes and bronchial hyperreactivity patients with di-isocyanate induced asthma. A follow-up study / J. Leppilahti, M.-L. Majuri, T. Sorsa, A. Hirvonen, P. Piirilä // Front. Med. (Lausanne). – 2019. – Vol. 6. – P. 220. DOI: 10.3389/fmed.2019.00220
  20. GSTM1, GSTP1, and NQO1 polymorphisms and susceptibility to atopy and airway hyperresponsiveness among South African schoolchildren / P. Reddy, R.N. Naidoo, T.G. Robins, G. Mentz, S.J. London, H. Li, R. Naidoo // Lung. – 2010. – Vol. 188, № 5. – P. 409–414. DOI: 10.1007/s00408-010-9246-3
  21. Interactions between glutathione S-transferase P1, tumor necrosis factor, and traffic-related air pollution for development of childhood allergic disease / E. Melén, F. Nyberg, C.M. Lindgren, N. Berglind, M. Zucchelli, E. Nordling, J. Hallberg, M. Svartengren [et al.] // Environ. Health Perspect. – 2008. – Vol. 116, № 8. – P. 1077–1084. DOI: 10.1289/ehp.11117
  22. Orofacial cleft risk is increased with maternal smoking and specific detoxificationgene variants / M. Shi, K. Chris-tensen, C.R. Weinberg, P. Romitti, L. Bathum, A. Lozada, R.W. Morris, M. Lovett, J.C. Murray // Am. J. Hum. Genet. – 2007. – Vol. 80, № 1. – P. 76–90. DOI: 10.1086/510518
  23. Polymorphisms in GSTP1, GSTM1, and GSTT1 and susceptibility to colorectal cancer / M. Welfare, A.M. Adeokun, M.F. Bassendine, A.K. Daly // Cancer Epidemiol. Biomarkers Prev. – 1999. – Vol. 8, № 4, pt 1. – P. 289–292.
  24. Genetic variation in genes for the xenobiotic-metabolizing enzymes CYP1A1, EPHX1, GSTM1, GSTT1, and GSTP1 and susceptibility to colorectal cancer in Lynch syndrome / M. Pande, C.I. Amos, D.R. Osterwisch, J. Chen, P.M. Lynch, R. Broaddus, M.L. Frazier // Cancer Epidemiol. Biomarkers Prev. – 2008. – Vol. 17, № 9. – P. 2393–2401. DOI: 10.1158/1055-9965.EPI-08-0326
  25. The association of NAT1 polymorphisms and colorectal carcinoma risk: evidence from 20,000 subjects / J. Cai, Y. Zhao, C.L. Zhu, J. Li, Z.H. Huang // Mol. Biol. Rep. – 2012. – Vol. 39, № 7. – P. 7497–7503. DOI: 10.1007/s11033-012-1583-2
  26. Meat and heterocyclic amine intake, smoking, NAT1 and NAT2 polymorphisms, and colorectal cancer risk in the multiethnic cohort study / U. Nöthlings, J.F. Yamamoto, L.R. Wilkens, S.P. Murphy, S.-Y. Park, B.E. Henderson, L.N. Kolonel, L. Le Marchand // Cancer Epidemiol. Biomarkers Prev. – 2009. – Vol. 18, № 7. – P. 2098–2106. DOI: 10.1158/1055-9965.EPI-08-1218
  27. GSTA1, GSTM1, GSTP1, and GSTT1 polymorphisms and susceptibility to smoking-related bladder cancer: a case-control study / M. Matic, T. Pekmezovic, T. Djukic, J. Mimic-Oka, D. Dragicevic, B. Krivic, S. Suvakov, A. Savic-Radojevic [et al.] // Urol. Oncol. – 2013. – Vol. 31, № 7. – P. 1184–1192. DOI: 10.1016/j.urolonc.2011.08.005
  28. Glutathione S-transferase GSTP1 is a susceptibility gene for occupational asthma induced by isocyanates / C.E. Mapp, A.A. Fryer, N. De Marzo, V. Pozzato, M. Padoan, P. Boschetto, R.C. Strange, A. Hemmingsen, M.A. Spiteri // J. Allergy Clin. Immunol. – 2002. – Vol. 109, № 5. – P. 867–872. DOI: 10.1067/mai.2002.123234
  29. Ассоциация генетических полиморфизмов глутатион-S-трансферазы-π1 с офтальмопатологией у работников металлургического производства / М.А. Мельниченко, Н.В. Мальцева, О.Ф. Лыкова, Е.В. Конышева, В.И. Забелин, А.Л. Онищенко // Молекулярная медицина. – 2011. – № 1. – С. 22–27.
  30. Персонализированный подход к лечению первичной открытоугольной глаукомы / А.Л. Онищенко, Н.В. Мальцева, А.Ш. Смирнова, О.М. Казанцева, С.И. Макогон // Офтальмология. – 2021. – Т. 18, № 3. – С. 546–551. DOI: 10.18008/1816-5095-2021-3-546-551
  31. Genetic polymorphisms of superoxide dismutase 1 are associated with the serum lipid profiles of Han Chinese adults in a sexually dimorphic manner / P. Xu, Y. Zhu, X. Liang, C. Gong, Y. Xu, C. Huang, X.-L. Liu, J.-C. Zhou // PLoS One. – 2020. – Vol. 15, № 6. – P. e0234716. DOI: 10.1371/journal.pone.0234716
  32. Effect of Cu, Zn superoxide dismutase on cholesterol metabolism in human hepatocarcinoma (HepG2) cells / P. Mondola, R. Serù, M. Santillo, S. Damiano, M. Bifulco, C. Laezza, P. Formisano, G. Rotilio, M.R. Ciriolo // Biochem. Bio-phys. Res. Commun. – 2002. – Vol. 295, № 3. – P. 603–609. DOI: 10.1016/s0006-291x (02) 00720-9
  33. Comparison of occupational exposure assessment methods in a case–control study of lead, genetic susceptibility and risk of adult brain tumours / P. Bhatti, P.A. Stewart, M.S. Linet, A. Blair, P.D. Inskip, P. Rajaraman // Occup. Environ. Med. – 2011. – Vol. 68, № 1. – P. 4–9. DOI: 10.1136/oem.2009.048132
  34. Occupational lead exposure and associations with selected cancers: the shanghai men’s and women’s health study co-horts / L.M. Liao, M.C. Friesen, Y.-B. Xiang, H. Cai, D.-H. Koh, B.-T. Ji, G. Yang, H.-L. Li [et al.] // Environ. Health Perspect. – 2016. – Vol. 124, № 1. – P. 97–103. DOI: 10.1289/ehp.1408171
  35. Association between haplotypes of manganese superoxide dismutase (SOD2), smoking, and lung cancer risk / C.J. Gallagher, K. Ahn, A.L. Knipe, A.-M. Dyer, J.P. Richie Jr., P. Lazarus, J.E. Muscat // Free Radic. Biol. Med. – 2009. – Vol. 46, № 1. – P. 20–24. DOI: 10.1016/j.freeradbiomed.2008.09.018
  36. [Association between SNPs in SOD1 and noise-induced hearing loss in Chinese Han population] / X.-D. Li,
    J.-X. Chen, Y.-M. Liu, S.-B. Su, X. Guo // Zhonghua Lao Dong Wei Sheng Zhi Ye Bing Za Zhi [Chinese journal of industrial hygiene and occupational diseases]. – 2011. – Vol. 29, № 12. – P. 921–924 (in Chinese).
  37. Luning Prak E.T., Kazazian H.H. Jr. Mobile elements and the human genome // Nat. Rev. Genet. – 2000. – Vol. 1, № 2. – P. 134–144. DOI: 10.1038/35038572
  38. Frequent human genomic DNA transduction driven by LINE-1 retrotransposition / O.K. Pickeral, W. Makałowski, M.S. Boguski, J.D. Boeke // Genome Res. – 2000. – Vol. 10, № 4. – P. 411–415. DOI: 10.1101/gr.10.4.411
  39. Reading between the LINEs: human genomic variation induced by LINE-1 retrotransposition / F. Sheen, S.T. Sherry, G.M. Risch, M. Robichaux, I. Nasidze, M. Stoneking, M.A. Batzer, G.D. Swergold // Genome Res. – 2000. – Vol. 10, № 10. – P. 1496–1508. DOI: 10.1101/gr.149400
  40. Altering genomic integrity: heavy metal exposure promotes transposable element-mediated damage / M.E. Morales, G. Servant, C. Ade, A.M. Roy-Engel // Biol. Trace Elem. Res. – 2015. – Vol. 166, № 1. – P. 24–33. DOI: 10.1007/s12011-015-0298-3
  41. The synergistic effect between the Mediterranean diet and GSTP1 or NAT2 SNPs decreases breast cancer risk in Greek-Cypriot women / M.G. Kakkoura, M.A. Loizidou, C.A. Demetriou, G. Loucaides, M. Daniel, K. Kyriacou, A. Hadjisavvas // Eur. J. Nutr. – 2017. – Vol. 56, № 2. – P. 545–555. DOI: 10.1007/s00394-015-1099-3
  42. Dietary glucosinolate intake, polymorphisms in selected biotransformation enzymes, and risk of prostate cancer / A. Steinbrecher, S. Rohrmann, M. Timofeeva, A. Risch, E. Jansen, J. Linseisen // Cancer Epidemiol. Biomarkers Prev. – 2010. – Vol. 19, № 1. – P. 135–143. DOI: 10.1158/1055-9965.EPI-09-0660
  43. Lampe J.W. Interindividual differences in response to plant-based diets: implications for cancer risk // Am. J. Clin. Nutr. – 2009. – Vol. 89, № 5. – P. 1553S–1557S.
  44. Dietary intake of isothiocyanates: evidence of a joint effect with glutathione S-transferase polymorphisms in lung cancer risk / M.R. Spitz, C.M. Duphorne, M.A. Detry, P.C. Pillow, C.I. Amos, L. Lei, M. de Andrade, X. Gu [et al.] // Cancer Epidemiol. Biomarkers Prev. – 2000. – Vol. 9, № 10. – P. 1017–1020.
  45. GSTP1 and GSTA1 polymorphisms interact with cruciferous vegetable intake in colorectal adenoma risk / M.J. Tijhuis, P.A. Wark, J.M.M.J.G. Aarts, M.H.P.W. Visker, F.M. Nagengast, F.J. Kok, E. Kampman // Cancer Epidemiol. Biomarkers Prev. – 2005. – Vol. 14, № 12. – P. 2943–2951. DOI: 10.1158/1055-9965.EPI-05-0591
  46. Contribution of Biotransformations Carried Out by the Microbiota, Drug-Metabolizing Enzymes, and Transport Pro-teins to the Biological Activities of Phytochemicals Found in the Diet / A. Boronat, J. Rodriguez-Morató, G. Serreli, M. Fitó, R.F. Tyndale, M. Deiana, R. de la Torre // Adv. Nutr. – 2021. – Vol. 12, № 6. – P. 2172–2189. DOI: 10.1093/advances/nmab085
  47. In vivo biological activity of rocket extracts (Eruca vesicaria subsp. sativa (Miller) Thell) and sulforaphane / M. Villato-ro-Pulido, R. Font, S. Saha, S. Obregón-Cano, J. Anter, A. Muñoz-Serrano, A. De Haro-Bailón, A. Alonso-Moraga, M. Del Río-Celestino // Food Chem. Toxicol. – 2012. – Vol. 50, № 5. – P. 1384–1392. DOI: 10.1016/j.fct.2012.02.017
  48. Erwin J.A., Marchetto M.C., Gage F.H. Mobile DNA elements in the generation of diversity and complexity in the brain // Nat. Rev. Neurosci. – 2014. – Vol. 15, № 8. – P. 497–506. DOI: 10.1038/nrn3730
  49. Dietary antioxidants remodel DNA methylation patterns in chronic disease / M. Beetch, S. Harandi-Zadeh, K. Shen, K. Lubecka, D.D. Kitts, H.M. O’Hagan, B. Stefanska // Br. J. Pharmacol. – 2020. – Vol. 177, № 6. – P. 1382–1408. DOI: 10.1111/bph.14888
  50. Soda K. Overview of Polyamines as Nutrients for Human Healthy Long Life and Effect of Increased Polyamine Intake on DNA Methylation // Cells. – 2022. – Vol. 11, № 1. – P. 164. DOI: 10.3390/cells11010164
  51. Effects of fermented rice bran on DEN‐induced oxidative stress in mice: GSTP1, LINE‐1 methylation, and telomere length ratio / M.-K. Park, J.-C. Lee, J.-W. Lee, S. Kang, J.H. Kim, M.H. Park, S.-J. Hwang, M.J. Lee // J. Food Biochem. – 2020. – Vol. 44, № 7. – P. e13274. DOI: 10.1111/jfbc.13274
  52. Влияние флавоноидов на экспрессию генов человека / Р.А. Зайнуллин, Э.К. Хуснутдинова, А.Д. Ильина, Р.В. Кунакова, Б.И. Ялаев // Вестник Башкирского университета. – 2018. – Т. 23, № 2.– С. 395–405.
  53. Nutrigenomics: Epigenetics and cancer prevention: A comprehensive review / A. Nasir, M.M. Hassan Bullo, Z. Ahmed, A. Imtiaz, E. Yaqoob, M. Jadoon, H. Ahmed, A. Afreen, S. Yaqoob // Crit. Rev. Food Sci. Nutr. – 2020. – Vol. 60, № 8. – P. 1375–1387. DOI: 10.1080/10408398.2019.1571480
  54. Heber D. Vegetables, fruits and phytoestrogens in the prevention of diseases // J. Postgrad. Med. – 2004. – Vol. 50, № 2. – P. 145–149.
  55. Soy phytoestrogens modify DNA methylation of GSTP1, RASSF1A, EPH2 and BRCA1 promoter in prostate cancer cells / A. Vardi, R. Bosviel, N. Rabiau, M. Adjakly, S. Satih, P. Dechelotte, J.-P. Boiteux, L. Fontana [et al.] // In Vivo. – 2010. – Vol. 24, № 4. – P. 393–400.
  56. Antioxidant-rich diet, GSTP1 rs1871042 polymorphism, and gastric cancer risk in a hospital-based case-control study / J. Kim, H. Kim, J. Lee, I.J. Choi, Y.-I. Kim, J. Kim // Front. Oncol. – 2021. – Vol. 10. – P. 596355. DOI: 10.3389/fonc.2020.596355
  57. Childhood brain tumors and maternal cured meat consumption in pregnancy: differential effect by glutathione S-transferases / S.S. Nielsen, B.A. Mueller, S. Preston-Martin, F.M. Farin, E.A. Holly, R. McKean-Cowdin // Cancer Epidemiol. Biomarkers Prev. – 2011. – Vol. 20, № 11. – P. 2413–2419. DOI: 10.1158/1055-9965.EPI-11-0196
  58. Нелюбина Е.Г. Молекулярные механизмы воздействия пищи на гены // Парадигма. – 2019. – № 3. – С. 81–83.
  59. A comprehensive understanding about the pharmacological effect of diallyl disulfide other than its anti-carcinogenic activities / H. He, Y. Ma, H. Huang, C. Huang, Z. Chen, D. Chen, Y. Gu, X. Wang, J. Chen // Eur. J. Pharmacol. – 2021. – Vol. 893. – P. 173803. DOI: 10.1016/j.ejphar.2020.173803
  60. Garlic oil attenuated nitrosodiethylamine-induced hepatocarcinogenesis by modulating the metabolic activation and detoxification enzymes / C.-L. Zhang, T. Zeng, X.-L. Zhao, K.-Q. Xie // Int. J. Biol. Sci. – 2013. – Vol. 9, № 3. – P. 237–245. DOI: 10.7150/ijbs.5549
  61. Garlic organosulfur compounds upregulate the expression of the π class of glutathione S-transferase in rat primary hepatocytes / C.W. Tsai, J.-J. Yang, H.-W. Chen, L.-Y. Sheen, C.-K. Lii // J. Nutr. – 2005. – Vol. 135, № 11. – P. 2560–2565. DOI: 10.1093/jn/135.11.2560
  62. Price P.T., Nelson C.M., Clarke S.D. Omega-3 polyunsaturated fatty acid regulation of gene expression // Curr. Opin. Lipidol. – 2000. – Vol. 11, № 1. – P. 3–7. DOI: 10.1097/00041433-200002000-00002
  63. Новиков П.В. Нутригенетика и нутригеномика – новые направления в нутрициологии в постгеномный период // Вопросы детской диетологии. – 2012. – Т. 10, № 1. – С. 44–52.
  64. Simopoulos A.P. Evolutionary aspects of diet, the omega-6/omega-3 ratio and genetic variation: nutritional implications for chronic diseases // Biomed. Pharmacother. – 2006. – Vol. 60, № 9. – P. 502–507. DOI: 10.1016/j.biopha.2006.07.080
  65. Watts J.L. Using Caenorhabditis elegans to uncover conserved functions of omega-3 and omega-6 fatty acids // J. Clin. Med. – 2016. – Vol. 5, № 2. – P. 19. DOI: 10.3390/jcm5020019
  66. Influences of diet and the gut microbiome on epigenetic modulation in cancer and other diseases / B. Paul, S. Barnes, W. Demark-Wahnefried, C. Morrow, C. Salvador, C. Skibola, T.O. Tollefsbol // Clin. Epigenetics. – 2015. – Vol. 7. – P. 112. DOI: 10.1186/s13148-015-0144-7
  67. Urolithins, the rescue of “old” metabolites to understand a “new” concept: metabotypes as a nexus among phenolic metabolism, microbiota dysbiosis, and host health status / F.A. Tomas-Barberan, A. Gonzalez-Sarrias, R. Garcia-Villalba, M.A. Nunez-Sanchez, M.V. Selma, M.T. Garcia-Conesa, J.C. Espin // Mol. Nutr. Food Res. – 2017. – Vol. 61, № 1. – P. 1500901. DOI: 10.1002/mnfr.201500901
  68. Влияние пробиотиков на продукцию цитокинов в системах in vitro и in vivo / О.В. Аверина, Е.И. Ермоленко, А.Ю. Ратушный, Е.А. Тарасова, Ю.Ю. Борщев, Г.Ф. Леонтьева, Т.А. Крамская, М.П. Котылева [и др.] // Медицинская иммунология. – 2015. – Т. 17, № 5. – С. 443–454. DOI: 10.15789/1563-0625-2015-5-443-454
  69. Human gut bacteria as potent class I histone deacetylase inhibitors in vitro through production of butyric acid and valeric acid / S. Yuille, N. Reichardt, S. Panda, H. Dunbar, I.E. Mulder // PLoS One. – 2018. – Vol. 13, № 7. – P. e0201073. DOI: 10.1371/journal.pone.0201073
  70. The effect of food intake on gene expression in human peripheral blood / A.S. Leonardson, J. Zhu, Y. Chen, K. Wang, J.R. Lamb, M. Reitman, V. Emilsson, E.E. Schadt // Hum. Mol. Genet. – 2010. – Vol. 19, № 1. – P. 159–169. DOI: 10.1093/hmg/ddp476
  71. Patterns of gene expression in atrophying skeletal muscles: response to food deprivation / R.T. Jagoe, S.H. Lecker, M. Gomes, A.L. Goldberg // FASEB J. – 2002. – Vol. 16, № 13. – P. 1697–1712. DOI: 10.1096/fj.02-0312com
  72. Nutrigenetics and nutrigenomics: viewpoints on the current status and applications in nutrition research and practice / M. Fenech, A. El-Sohemy, L. Cahill, L.R. Ferguson, T.-A.C. French, E.S. Tai, J. Milner, W.-P. Koh [et al.] // J. Nutrigenet. Nu-trigenomics. – 2011. – Vol. 4, № 2. – P. 69–89. DOI: 10.1159/000327772
  73. Laddu D., Hauser M. Addressing the nutritional phenotype through personalized nutrition for chronic disease preven-tion and management // Prog. Cardiovasc. Dis. – 2019. – Vol. 62, № 1. – P. 9–14. DOI: 10.1016/j.pcad.2018.12.004
Получена: 
04.10.2022
Одобрена: 
08.12.2022
Принята к публикации: 
18.12.2022

Вы здесь

Главная