Распознающие гликопаттерны NK-клетки против опухолей на фоне эпидемически значимых вирусных инфекций

Файл статьи: 
Иконка PDF health-risk-analysis-2019-1-16.pdf
УДК: 
617.741-004.1-053.9
DOI: 
10.21668/health.risk/2019.1.16
Авторы: 

М.В. Лахтин, В.М. Лахтин, В.А. Алёшкин, С.С. Афанасьев

Организация: 

Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского, Россия, 212125, г. Москва, ул. Адмирала Макарова, 10

Аннотация: 

Риски развития опухолевых процессов на фоне вирусных инфекций, а также факторы, определяющие эти риски или снижающие их, остаются недостаточно изученными. Цель – провести научный обзор исследований, посвященных оценке потенциала лектиновых NK-популяций (natural killers) клеточных популяций в организме с варьирующим набором лектиновых и других функционально значимых поверхностно-клеточных рецепторов против опухолей в условиях присутствия вирусов, в том числе эпидемически значимых. Показано, что в межклеточных коммуникациях и действии NK-популяций важную роль играет кофункционирование распознающих гликопаттерны лектиновых (базисных), Ig-подобных, цитотоксических и других эффекторных (настроечных) рецепторов и их лигандов, перераспределяющих цитокины. Сеть NK-популяций является перспективным ресурсом защиты организма, который необходимо учитывать при разработке новых противоопухолевых и антивирусных стратегий профилактического и лечебного профиля. Отсутствие в организме определенных NK-популяций с защитными функциями может рассматриваться как еще один – новый мультифакторный критерий риска вирусных и онкологических болезней у индивидуума или контингента индивидуумов региона. Приведенные данные могут быть использованы для разработки новых противоопухолевых, антивирусных и вакцинных препаратов и стратегий. К перспективным лигандам межклеточных коммуникаций иммунного надзора относятся пробиотические лектины.

Ключевые слова: 
вирусные инфекции, опухоли, многофакторное заболевание, факторы риска, рецепторные лектины, NK-клетки, противоопухолевые стратегии
Распознающие гликопаттерны nk-клетки против опухолей на фоне эпидемически значимых вирусных инфекций / М.В. Лахтин, В.М. Лахтин, В.А. Алёшкин, С.С. Афанасьев // Анализ риска здоровью. – 2019. – № 1. – С. 144–153. DOI: 10.21668/health.risk/2019.1.16
Список литературы: 
  1. Лектиновые рецепторы в коммуникациях / М.В. Лахтин, В.М. Лахтин, В.А. Алёшкин, C.С. Афанасьев // News of science and education. – 2018. – Т. 2, № 3. – C. 76–98.
  2. Лектины в антираковых стратегиях / М.В. Лахтин, В.М. Лахтин, В.А. Алёшкин, М.С. Афанасьев, С.С. Афанасьев // Acta Biomedica Scientifica. – 2018. – Т. 3, № 4. – С. 69–77.
  3. Новые гликоконъюгаты распознающие системы в прогнозировании антиинфекционного интерактома человека / М.В. Лахтин, В.М. Лахтин, С.С. Афанасьев, В.А. Алешкин // Здоровье и образование в XXI веке. Серия: Медицина. – 2015. – Т. 17, № 4. – С. 378–383.
  4. Надзор за микробиоценозами: новые подходы / М.В. Лахтин, В.М. Лахтин, С.С. Афанасьев, А.Л. Байракова, В.А. Алешкин // Обеспечение эпидемиологического благополучия: вызовы и решения: материалы XI Съезда Всеросcийского научно-практического общества эпидемиологов, микробиологов и паразитологов / под ред. А.Ю. Поповой. – СПб.: ФБУН НИИ эпидемиологии и микробиологии имени Пастера, 2017. – С. 436.
  5. Кандидные маркеры болезней урогенитальных биотопов: реактивность к лектинам пробиотиков / М.В. Лахтин, В.М. Лахтин, С.С. Афанасьев, А.Л. Байракова, В.А. Алешкин, М.С. Афанасьев // Acta Biomedica Scientifica. – 2018. – Т. 3, № 1. – С. 49–53.
  6. Latent cytomegalovirus infection enhances anti-tumour cytotoxicity through accumulation of NKG2C+ NK cells in healthy humans / A.B. Bigley, K. Rezvani, N. Shah, T. Sekine, N. Balneger, M. Pistillo [et al.] // Clinical & Experimental Immunology. – 2016. – Vol. 185, № 2. – P. 239–251.
  7. NK cell influence on the outcome of primary Epstein-Barr virus infection / O. Chijioke, V. Landtwing, C. Münz // Frontiers in Immunology. – 2016. – Vol. 7, № 323. DOI: 10.3389/fimmu.2016.00323
  8. Immune evasion mediated by tumor-derived lactate dehydrogenase induction of NKG2D ligands on myeloid cells in glioblastoma patients / C.A. Crane, K. Austgen, K. Haberthur, C. Hofmann, K.W. Moyes, L. Avanesyan [et al.] // Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA. – 2014. – Vol. 111, № 35. – P. 12823–12828.
  9. Exploiting natural killer group 2D receptors for CAR T-cell therapy / B. Demoulin, W.J. Cook, J. Murad, D.J. Graber, M.-L. Sentman, C. Lonez [et al.] // Future Oncology. – 2017. – Vol. 13, № 18. – P. 1593–1605.
  10. Cytomegalovirus-infected primary endothelial cells trigger NKG2C+ natural killer cells / Z. Djaoud, R. Riou, P.J. Gav-lovsky, S. Mehlal, C. Bressollette, N. Gérard [et al.] // Journal of Innate Immunity. – 2016. – Vol. 8, № 4. – P. 374–385.
  11. Two alternate strategies for innate immunity to Epstein-Barr virus: One using NK cells and the other NK cells and gamma-delta T cells / Z. Djaoud, L.A. Guethlein, A. Horowitz, T. Azzi, N. Nemat-Gorgani, D. Olive, D. Nadal [et al.] // The Journal of Experimental Medicine. – 2017. – Vol. 214, № 6. – P. 1827–1841.
  12. NKG2H-expressing T cells negatively regulate immune responses / D. Dukovska, D. Fernández-Soto, M. Valés-Gómez, H.T. Reyburn // Frontiers in Immunology. – 2018. – Vol. 9, № 390. DOI: 10.3389/fimmu.2018.00390
  13. A functional polymorphism in the NKG2D gene modulates NK-cell cytotoxicity and is associated with susceptibility to Human Papilloma Virus-related cancers / J.L. Espinoza, V.H. Nguyen, H. Ichimura, T.T. Pham, C.H. Nguyen, T.V. Pham [et al.] // Scientific Reports. – 2016. – Vol. 6, № 39231. DOI: 10.1038/srep39231
  14. Espinoza J.L., Minami M. Sensing bacterial-induced DNA damaging effects via natural killer group 2 member D immune receptor: From dysbiosis to autoimmunity and carcinogenesis // Frontiers in Immunology. – 2018. – Vol. 9, № 52. DOI: 10.3389/fimmu.2018.00052
  15. Fehniger T.A., Cooper M.A. Harnessing NK cell memory for cancer immunotherapy // Trends in Immunology. – 2016. – Vol. 37, № 12. – P. 877–888.
  16. Memory T Cells Expressing an NKG2D-CAR Efficiently Target Osteosarcoma Cells / L. Fernandez, J.-Y. Metais, A. Escudero, M. Vela, J. Valentín, I. Vallcorba [et al.] // Clinical Cancer Research. – 2017. – Vol. 23, № 19. – P. 5824–5835. DOI: 10.1158/1078-0432.CCR-17-0075
  17. Georgountzou A., Papadopoulos N.G. Postnatal innate immune development: From birth to adulthood // Frontiers in Immunology. – 2017. – Vol. 8, № 957. DOI: 10.3389/fimmu.2017.00957
  18. Identification of a novel HERV-K (HML10): Comprehensive characterization and comparative analysis in non-human primates provide insights about HML10 proviruses structure and diffusion / N. Grandi, M. Cadeddu, M.P. Pisano, F. Esposito, J. Blomberg, E. Tramontano // Mobile DNA. – 2017. Vol. 8, № 15. DOI: 10.1186/s13100-017-0099-7
  19. Weak vaccinia virus-induced NK cell regulation of CD4 T cells is associated with reduced NK cell differentiation and cytolytic activity / S.D. Hatfield, K.A. Daniels, C.L. O'Donnell, S.N. Waggoner, R.M. Welsh // Virology. – 2018. – Vol. 519. – P. 131–144.
  20. Defective natural killer cell antiviral capacity in paediatric HBV infection / I.L. Heiberg, L.J. Pallett, T.N. Winther, B. Høgh, M.K. Maini, D. Peppa // Clinical & Experimental Immunology. – 2015. – Vol. 179, № 3. – P. 466–476.
  21. Transient complement inhibition promotes a tumor-specific immune response through the implication of natural killer cells / V. Janelle, M.P. Langlois, E. Tarrab, P. Lapierre, L. Poliquin, A. Lamarre // Cancer Immunology Research. – 2014. – Vol. 2, № 3. – P. 200–206.
  22. Tonsillar CD56brightNKG2A+ NK cells restrict primary Epstein-Barr virus infection in B cells via IFN-gamma / A. Jud, M. Kotur, C. Berger, C. Gysin, D. Nadal, A. Lünemann // Oncotarget. – 2017. – Vol. 8, № 4. – P. 6130–6141.
  23. Phenotype of NK cells determined on the basis of selected immunological parameters in children treated due to acute lymphoblastic leukemia / S. Koltan, R. Debski, A. Koltan, E. Grzesk, B. Tejza, A. Eljaszewicz [et al.] // Medicine (Baltimore). – 2015. – Vol. 94, № 52. – P. 2369. DOI: 10.1097/MD.0000000000002369
  24. High-resolution phenotyping identifies NK cell subsets that distinguish healthy children from adults / S. Mahapatra, E.M. Mace, C.G. Minard, L.R. Forbes, A. Vargas-Hernandez, T.K. Duryea [et al.] // PLoS One. – 2017. – Vol. 12, № 8. – Р. e0181134. DOI: 10.1371/journal.pone.0181134
  25. Cytomegalovirus-driven adaptive-like natural killer cell expansions are unaffected by concurrent chronic hepatitis virus infections / D.F.G. Malone, S. Lunemann, J. Hengst, H.G. Ljunggren, M.P. Manns, J.K. Sandberg [et al.] // Frontiers in Immunology. – 2017. – Vol. 8, № 525. DOI: 10.3389/fimmu.2017.00525.
  26. Contrasting adult and infant immune responses to HIV infection and vaccination / D.R. Martinez, S.R. Permar, G.G. Fouda // Clinical and Vaccine Immunology. – 2015. – Vol. 23, № 2. – P. 84–94.
  27. Adaptive reconfiguration of the human NK-cell compartment in response to cytomegalovirus: A different perspective of the host-pathogen interaction / A. Muntasell, C. Vilches, A. Angulo, M. López-Botet // European Journal of Immunology. – 2013. – Vol. 43, № 5. – P. 1133–1141.
  28. Münz C. Epstein-Barr virus-specific immune control by innate lymphocytes // Frontiers in Immunology. – 2017. – Vol. 8, № 1658. DOI: 10.3389/fimmu.2017.01658
  29. Expansion of NKG2C-expressing natural killer cells after umbilical cord blood transplantation in a patient with peripheral T-cell lymphoma with cytotoxic molecules / T. Muta, T. Yoshihiro, F. Jinnouchi, K. Aoki, Y. Kochi, T. Shima [et al.] // Internal Medicine. – 2018. – Vol. 57, № 6. – P. 861–866.
  30. Peled J.U., Jenq R.R. Not. just leukemia: CMV may protect against lymphoma recurrence after allogeneic transplant // Leukemia & Lymphoma. – 2017. – Vol. 58, № 4. – P. 759–761.
  31. Peppa D. Natural killer cells in human immunodeficiency virus-1 infection: spotlight on the impact of human cyto-megalovirus // Frontiers in Immunology. – 2017. – Vol. 8, № 1322. DOI: 10.3389/fimmu.2017.01322
  32. Natural killer cell subsets and receptor expression in peripheral blood mononuclear cells of a healthy Korean population: Reference range, influence of age and sex, and correlation between NK cell receptors and cytotoxicity / M.T. Phan, S. Chun, S.H. Kim, A.K. Ali, S.H. Lee, S. Kim [et al.] // Human Immunology. – 2017. – Vol. 78, № 2. – P. 103–112.
  33. Elusive role of the CD94/NKG2C NK cell receptor in the response to cytomegalovirus: Novel experimental observations in a reporter cell system / A. Pupuleku, M. Costa-García, D. Farré, H. Hengel, A. Angulo, A. Muntasell [et al.] // Frontiers in Immunology. – 2017. – Vol. 8, № 1317. DOI: 10.3389/fimmu.2017.01317
  34. Sehrawat S., Kumar D., Rouse B.T. Herpesviruses: Harmonious Pathogens but Relevant Cofactors in Other Diseases? // Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. – 2018. – Vol. 8, № 177. DOI: 10.3389/fcimb.2018.00177
  35. The expression of human natural killer cell receptors in early life / Y. Sundström, C. Nilsson, G. Lilja, K. Kärre, M. Troye-Blomberg, L. Berg // Scandinavian Journal of Immunology. – 2007. – Vol. 66, № 2–3. – P. 335–344.
  36. Stojanovic A., Correia M.P., Cerwenka A. The NKG2D/NKG2DL axis in the crosstalk between lymphoid and myeloid cells in health and disease // Frontiers in Immunology. – 2018. – Vol. 9, № 827. DOI: 10.3389/fimmu.2018.00827
  37. Tumor-derived CSF-1 induces the NKG2D ligand RAE-1-delta on tumor-infiltrating macrophages / T.W. Thompson, B.T. Jackson, P.J. Li, J. Wang, A.B. Kim, K.T.H. Huang [et al.] // Elife. – 2018. – Vol. 7, № e32919. DOI: 10.7554/eLife.32919
  38. Natural killer cell-based immunotherapy in gynecologic malignancy: A review / L.D. Uppendahl, C.M. Dahl, J.S. Miller, M. Felices, M.A. Geller // Frontiers in Immunology. – 2018. – Vol. 8, № 1825. DOI: 10.3389/fimmu.2017.01825
  39. Walter L., Petersen B. Diversification of both KIR and NKG2 natural killer cell receptor genes in macaques – implications for highly complex MHC-dependent regulation of natural killer cells // Immunology. – 2017. – Vol. 150, № 2. – P. 139–145.
  40. Augmented antitumor activity of NK-92 cells expressing chimeric receptors of TGF-beta-R II and NKG2D / Z. Wang, L. Guo, Y. Song, Y. Zhang, D. Lin, B. Hu [et al.] // Cancer Immunology, Immunotherapy. – 2017. – Vol. 66, № 4. – P. 537–548.
  41. NKG2D and its ligands: "One for all, all for one" / A. Zingoni, R. Molfetta, C. Fionda, A. Soriani, R. Paolini, M. Cip-pitelli [et al.] // Frontiers in Immunology. – 2018. – Vol. 9, № 476. DOI: 10.3389/fimmu.2018.00476
Получена: 
18.10.2018
Принята: 
26.01.2019
Опубликована: 
30.03.2019

Вы здесь

Главная