Система медиаторов иммунной регуляции как маркеров иммунологических нарушений у школьников в условиях повышенного поступления стронция с питьевой водой

Файл статьи: 
УДК: 
613.64: 616.717 – 057
Авторы: 

О.В. Долгих1,2, А.В. Кривцов1, К.Г. Старкова1, В.А. Лучникова1, О.А. Бубнова1,2, Д.Г. Дианова1, Н.В. Безрученко1,2, Н.А. Вдовина1

Организация: 

1 ФБУН «Федеральный научный центр медико-профилактических технологий управления рисками здоровью населения», Россия, 614045, г. Пермь, ул. Монастырская, 82
2 ФГБОУ ВПО «Пермский государственный национальный исследовательский университет», Россия, 614990, г. Пермь, ул. Букирева, 15

Аннотация: 

Проведена оценка иммунологических маркеров у школьников, экспонированных стронцием. Показано, что в условиях повышенного поступления стронция с питьевой водой индикация спонтанного и индуцированного уровня медиаторов in vitro позволяет выявить ранние функциональные нарушения иммунной системы. Установлено, что маркеры специфической гиперчувствительности и медиаторы межклеточной иммунной регуляции: IgG специфические к стронцию, цитокины IL-6, IL-10, IL-12, IL-17, α-TNF, GM-CSF, спонтанные и специфически стимулированные, RANKL, OPG – могут быть предложены для проведения идентификации риска нарушения здоровья в качестве ранних маркеров изменений иммунорегуляции у школьников, проживающих в зонах стронциевых геохимических провинций.

Ключевые слова: 
стронций, цитокины, маркеры
Система медиаторов иммунной регуляции как маркеров иммунологических нарушений у школьников в условиях повышенного поступления стронция с питьевой водой / О.В. Долгих, А.В. Кривцов, К.Г. Старкова, В.А. Лучникова, О.А. Бубнова, Д.Г. Дианова, Н.В. Безрученко, Н.А. Вдовина // Анализ риска здоровью. – 2015. – №3. – С. 61–67
Список литературы: 
  1. Венгеровский А.И., Хлусов И.А., Нечаев К.А. Молекулярные механизмы действия бисфосфонатов и стронция ранелата // Экcпеp. и клин. фаpмак. – 2014. – Т. 77 (9). – С. 43–46.
  2. Долгих О.В., Предеина Р.А., Дианова Д.Г. Экспериментальная оценка влияния фенолов на иммуно-регуляцию ex vivo // Анализ риска здоровью. – 2014. – № 1. – С. 73–81.
  3. Особенности лимфоцитарно-клеточного звена у детей, проживающих на техногенно-нагруженных территориях / О.В. Долгих, Н. В. Зайцева, Д.Г. Дианова, Т.С. Лыхина, А.В. Кривцов, А.М. Гугович // Биол. мембраны. – 2012. – Т. 29 (5). – С. 349–353.
  4. Approaches to the evaluation of chemical-induced immunotoxicity / K Krzystyniak [et. al.] // Environ Health Perspect. – 1995. – Vol. 103, suppl 9. – P. 17–22.
  5. Caverzasio J., Thouverey C. Activation of FGF receptors is a new mechanism by which strontium ranelate induces osteoblastic cell growth // Cell. Physiol. Biochem. – 2011. – Vol. 27 (3–4). – С. 243–250.
  6. Cytokine release and cytotoxicity in human keratinocytes and fibroblasts induced by phenols and sodium dodecyl sulfate / C.S. Newby [et. al.] // Journal of Investigative Dermatology. – 2000. – Vol. 115. – Р. 292–298.
  7. Fromigué О., Haÿ Е., Barbara А. Calcium sensing receptor-dependent and receptor-independent activation of osteoblast replication and survival by strontium ranelate // JCMM. – 2009. – Vol. 13 (8B). – Р. 2189–2199.
  8. Strontium enhances osteogenic differentiation of mesenchymal stem cells and in vivo bone formation by activating Wnt/catenin signaling / F. Yang, D. Yang, J. Tu, Q. Zheng, L. Cai, L. Wang // Stem cells. – 2011. – doi: 10.1002/stem.646.
  9. Strontium ranelate decreases RANKL-induced osteoclastic differentiation in vitro: involvement of the cal-cium sensing receptor / A. Caudrillier, A.-S. Hurtel-Lemaire, A. Wattel, F. Cournarie, C. Godin, L. Petit, J.-P. Petit, E. Terwilliger, S. Kamel, E.M. Brown, R. Mentaverri, M. Brazier // Mol. pharmacol. – 2010. – Vol. 4. – Р. 569–576.
  10. Switching Akt: From survival signaling to deadly response / M. Los, S. Maddika, B. Erb, K. Schulze-Osthoff // BioEssays. – 2009. – Vol. 31 (5). – Р. 492–495.
  11. The calcium-sensing receptor is involved in strontium ranelate-induced osteoclast apoptosis. New insights into the associated signaling pathways / A.S. Hurtel-Lemaire, R. Mentaverri, A. Caudrillier, F. Cournarie, A. Wattel, S. Kamel, E.F. Terwilliger, E.M. Brown, M. Brazier // JBC. – 2009. – Vol. 284. – Р. 575–584.
  12. The inhibitory effect of strontium-doped calcium polyphosphate particles on cytokines from macrophages and osteoblasts leading to aseptic loosening in vitro / C. Huang, L. Li, X. Yu, Z. Gu, X. Zhang // Biomed. mater. – 2014. – Vol. 9 (2). doi: 10.1088/1748-6041/9/2/025010.
  13. Tucci P. Caloric restriction: is mammalian life extension linked to p53? // AGING. – 2012. – № 8. – Р. 525–534.
  14. Wnt signaling through inhibition of β-catenin degradation in an intact axin1 complex / V.S. Li, S.S. Ng, P.J. Boersema, T.Y. Low, W.R. Karthaus, J.P. Gerlach, S. Mohammed, A.J. Heck, M.M. Maurice, T. Mahmoudi, H. Clevers // Cel. – 2012. – Vol. 149. – Р. 1245–1256.
  15. Yurchenko M., Shlapatska L.M., Sidorenko S.P.. The multilevel regulation of CD95 signaling outcome // Exp. oncol. – 2012. – Vol. 34 (3). – Р. 200–2011.
  16. Zaytseva N.V., Dianova D.G., Dolgykh O.V. Еffects of cellular immunity in conditions of surplus supply of strontium with consumed water // EJNH. – 2014. – № 1. – С. 7–8.

Вы здесь